1． 提取外周血淋巴細胞時，有那些注意事項？ 
答：如果取外周血淋巴細胞 (PBMC) 進行ELISPOT檢測，更好采用新鮮血液。在保證無菌操作的前提下，首先應保證取血時抗凝劑應及時充分的與血液混勻，避免血凝塊的出現。抗凝血更好及時提取PBMC，避免放置時間過長，室溫下避免過夜。應選用分離效果好的淋巴細胞分離液，避免PBMC中混有過多其他細胞成分或雜質。

2． 在分離外周血淋巴細胞時，發生了溶血，會影響我的試驗結果嗎？ 
答：外周血出現溶血后，在使用淋巴細胞分離液分離PBMC時，溶血產生的細胞碎片、血紅素等雜質將極大可能懸浮于分離液的層面，在吸取PBMC時非常容易混入這些雜質，由于混入細胞的細胞碎片和血紅素很難清洗去除，在進行ELISPOT實驗時，有可能沉積在培養板底，嚴重影響細胞因子和抗體的結合，進而影響實驗結果。

3． 采用什么方法分離外周血淋巴細胞適合于ELISPOT試驗？ 
答：使用專業的淋巴細胞分離液。國產的如：達科為公司生產的EZ-SepTM Human 9×（分離人PBMC）、EZ-SepTM Monkey 9×（分離猴的PBMC）、EZ-SepTM Mouse 1×（也可用來分離大鼠/兔子等的外周血淋巴細胞）；進口的如：Optiprep、Lymphoprep等。

4． 從動物脾臟組織分離淋巴細胞應如何操作？ 
答：取動物脾臟組織時，應注意取材的無菌操作。分離出脾臟組織，研磨后過200目篩網，保證所分離的細胞為單個細胞懸液。獲得細胞懸液后應該使用相應的淋巴細胞分離液進一步分離單個核細胞。

5． 在ELISPOT板上，每孔應該放置多少數目的淋巴細胞？ 
答：在使用ConA，PHA等陽性刺激孔中，一般放置的淋巴細胞數為 104～2×105。在使用抗原作為刺激劑的情況下，每孔細胞濃度可在1～4×105。在使用多克隆刺激劑的情況下，應適當調低細胞濃度。但由于所用刺激劑的強度和批號不同，建議初次進行ELISPOT檢測時，對刺激劑濃度和細胞濃度設立梯度，以保證較理想的實驗結果。

6． 對淋巴細胞進行：體外刺激預孵育、或板內同步刺激培養應如何操作？ 
答： 將抗原和淋巴細胞在體外混合，刺激并預孵育，是通用的方法。預孵育的淋巴細胞，在置入ELISPOT板之前應使用復溫到37℃的培養液清洗細胞1-2次。置入ELISPOT板以后通常在37℃培養5～6小時。 對于高度特異性抗原，可以采用將淋巴細胞和抗原同時加入ELISPOT板孔中，37℃培養箱中，同步進行刺激、培養、和細胞因子捕獲。淋巴細胞板內同步刺激培養的時間通常為22～24小時。

7． 在ELISPOT實驗中刺激物應如何選擇？ 
答：常用的非特異性刺激物有PMA/inomycin、PHA、Con A。根據具體的實驗選擇上稍有稍有不同，一般而言：刺激小鼠細胞用Con A或者PMA/inomycin，刺激人 PBMC多用PHA。 特異性的刺激物主要有CEF、ICE（只能用于人）等多肽或者蛋白。具體的技術問題詳情電話垂詢。

8． 在使用抗原刺激淋巴細胞培養過程中，我發現培養液變黃，有什么影響？ 
答：這種現象通常見于使用很強的多克隆抗原刺激淋巴細胞，某些多克隆抗原會導致淋巴細胞凋亡或者死亡，大量淋巴細胞死亡后使培養液變黃。使用這些淋巴細胞進行后續ELISPOT試驗通常得到很低的斑點（SPOT）形成。換用特異性抗原后可以避免該現象。

9． 在ELISPOT結果中出現：不規則的大塊斑點，有的區域沒有斑點是什么原因？ 
答：不規則斑點區域的出現一般是細胞分離不完全所至，有時候采用多克隆抗原孵育的淋巴細胞也會產生成團現象。請確認加入到ELISPOT板中進行孵育的是單細胞懸液。

10.關于培養基的選擇問題 
答：推薦使用無血清培養基（注意：是指專業的完全培養基，不是不含血清的1640等基本培養基）如國產的達科為公司的生產的Lympho-SpotTM 無血清培養基、進口的荷蘭U-Cytech公司生產的Lympho-SpotTM serum free medium等。當然客戶也可以根據實際情況選用自備的1640培養基（含5%血清），但是血清帶來的干擾無法排除。